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大家都在说 qRT-PCR 实验原理、引物设计、结果解读等,而我觉得我应该和大家分享一下 qRT-PCR 的实验操作事项。虽小,但是关乎结果。
在做 qRT-PCR 之前,我们需要对自己的 RNA 以及操作方法有清楚的了解,毕竟我们的努力是希望得到结果的,而不是简单的练练手。所以在做 qRT-PCR 之前,我们需要确定以下问题(部分内容仅适用于 SYBR)。
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你确定你的 RNA 没有降解吗?
NanoDrop 2000 只能检测 RNA 的浓度以及纯度,而对于 RNA 的完整性是没法检测的。
RNA(RNA Intesity Number)值可以反映 RNA 的完整性,通过 Agilent 2100 Bioanalyzer system 来检测。
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图. 不同 RNA 样本的 RIN 值示意图(真核生物)
但是实验室一般不会有 Agilent 2100 Bioanalyzer,在这种情况下,我们可以通过甲醛胶检测,但是对 RNA 总量的要求高,那么最快速的方法就是用普通的凝胶电泳。要求在 nuclease-free 的环境下,所以需要将电泳槽、溶胶瓶、凝胶托槽以及梳子用 DEPC 水冲洗干净。琼脂糖也是 nuclease-free(只要是新开封的就行),Loading Buffer 尽可能是新开封的,配置 1.2% 的凝胶。
注意,凝胶一定要保证溶解完全,要不然会导致条带不均一,如图中样品 9。电压太高或者跑太长时间会产热,导致 RNA 降解,所以要合理控制电压和时间。此外,跑胶也可以进一步确定样品中是否有 DNA 的残留,观测点胶孔是否有大量滞留的条带。
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图. 凝胶电泳检测 RNA
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你确定你的 cDNA 的浓度吗?
实验室大师兄的经验是每次反转得到的 20 ul 体系的 cDNA 直接稀释 20X,而博后师姐是按照 10X 稀释,我一般是看情况而定。因为每个人提的 RNA 质量不同,反转的水平也分高低,再说反转的技术也未必稳定。
所以在每次拿到反转的 cDNA 后,我首先会稀释 3 倍左右,然后利用管家基因做一次 RT-PCR,循环数一般为 25 cycle,鉴定一下具体浓度,再决定最后的稀释倍数。
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你确定你的引物好用吗?
可以通过 qRT-PCR 的溶解曲线,但是呢,这个还是要耗钱的。对于没有很多钱的实验室来说,在拿到很多引物的时候,可以通过普通的 RT-PCR 看看是否是单一条带,鉴定一下引物的特异性。如果实验室不差钱,则可以通过溶解曲线对所有的引物的特异性做一次鉴定。
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你确定你的 PCR 板和仪器配套吗?
如果你用的是 BIO-RAD 公司的定量 PCR 仪器,那么你一定要买配套该仪器的 qRT-PCR 板。因为不兼容的 PCR 板会导致结果偏差。因为我的师姐就真的碰到过这种情况。
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你确定你的实验条件合适吗?
SYBR 要避免强光照射,所以在加 SYBR 试剂的时候尽量关掉头顶的照明灯,只需借助微光完成就可以。
SYBR 放置 4 ℃保存,使用时轻轻上下颠倒混匀即可,避免泡沫产生,切忌用力涡旋。
有些小师妹怕自己加样搞混,喜欢在 PCR 板上划出标志,这样做是不对的。因为你的标记极有可能影响到荧光信号的采集,所以一般我会建议师妹采用实验记录本协助记忆,如下所示。
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图.qRT-PCR 加样图
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你确定你的操作正确吗?
一定要戴手套,戴手套,戴手套,重要的事情说三遍。
为了减少 SYBR 在光下的曝光,个人喜欢先加入模板, 如下图。根据经验,少量模板的加入,容易造成加样误差。所以为了尽量减少加入少量模板造成的误差,我一般会将样本再稀释一倍,加样的时候多加一倍,减少 H2O2的加入量。
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图.qRT-PCR 加样示意图
然后配置 qRT-PCR 体系,如下。
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图.qRT-PCR 体系配制图
注:配置过程需在冰上完成。
加好样品后,贴好透明封板膜。尽量不要用手碰透明封板膜的表面,从膜两边空余处操作就行。因为手印也有可能可能影响到荧光信号的采集。然后就是用离心机低速迅速离心 10 S,防止样本挂壁。
好了,基本的操作部分以及注意事项就这么多,希望能帮到大家。想看更多,点击阅读原文,有 PCR 合集操作视频,包括普通 PCR、RT-PCR、qPCR等。
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